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Nextera DNA Library Prep Kit (24 samples)

Company: Illumina
Catalog#: FC-121-1030
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Company-protocol()
Other protocol()

Adapting the Smart-seq2 Protocol for Robust Single Worm RNA-seq
Author:
Date:
2018-02-20
[Abstract]  Most nematodes are small worms that lack enough RNA for regular RNA-seq protocols without pooling hundred to thousand of individuals. We have adapted the Smart-seq2 protocol in order to sequence the transcriptome of an individual worm. While developed for individual Steinernema carpocapsae and Caenorhabditis elegans larvae as well as embryos, the protocol should be adaptable for other nematode species and small invertebrates. In addition, we describe how to analyze the RNA-seq results using the Galaxy online environment. We expect that this method will be useful for the studying gene expression variances of individual nematodes in wild type and mutant backgrounds. [摘要]  大多数线虫是小蠕虫,缺乏足够的RNA用于常规的RNA-seq协议,而没有汇集成千上万的个体。 我们已经调整了Smart-seq2协议来排序单个蠕虫的转录组。 虽然针对Steinernema carpocapsae和Caenorhabditis elegans幼虫以及胚胎开发,但该方案应该适用于其他线虫物种和小无脊椎动物。 另外,我们介绍如何使用Galaxy在线环境分析RNA-seq结果。 我们预计这种方法将有助于研究野生型和突变体背景个体线虫的基因表达差异。

【背景】低输入RNA-seq方案和扩增试剂盒,例如Smart-seq(Takara Bio,USA,Inc)和SuperAmp(Miltenyl Biotec,Inc),已经越来越多地开发和商业化,作为对低输入RNA-基于小组织,单一微生物和单细胞的seq研究。这些研究经常探索并解决特定群体(例如细胞群体,复杂组织或微生物群体)的个体中的异源基因表达。针对微生物(如线虫)的低输入RNA-seq方案的改进和适应将通过允许在单一线虫水平上分析基因表达异质性而极大地有益于线虫领域。在这里,我们已经调整了单细胞RNA-seq方案Smart-seq2(Picelli等人,2013和2014; Trombetta等人,2014),对于单线虫RNA测序。我们成功地在昆虫寄生线虫Steinernema ...

Low-input Capture-C: A Chromosome Conformation Capture Assay to Analyze Chromatin Architecture in Small Numbers of Cells
Author:
Date:
2017-12-05
[Abstract]  Chromosome conformation capture (3C) techniques are crucial to understanding tissue-specific regulation of gene expression, but current methods generally require large numbers of cells. This protocol describes two new low-input Capture-C approaches that can generate high-quality 3C interaction profiles from 10,000-20,000 cells, depending on the resolution used for analysis. [摘要]  染色体构象捕获(3C)技术对于理解基因表达的组织特异性调节是至关重要的,但是目前的方法通常需要大量的细胞。 该协议描述了两种新的低输入Capture-C方法,根据用于分析的分辨率,可以从10,000-20,000个细胞生成高质量的3C相互作用谱。

【背景】3C技术在调查调控元件之间的核组织和结构相互作用与基因活性之间起关键作用(Dekker等人,2002)。 由于这些相互作用是高度组织特异性的,3C定义的纯化细胞群进行3C实验是至关重要的。

3C技术的一个主要局限性是所需要的大量细胞:目前的方法使用了10万到10万个细胞(Davies等人,2017)。 这些数字中不包含许多原发性组织和稀有细胞群。 因此,我们开发了两种新的低输入Capture-C方法,可以从最大分辨率的〜20,000个细胞(单独的DpnII片段)和使用基于开窗分析的约10,000个细胞产生高质量的相互作用谱(Oudelaar等人 。,2017)。

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