| Monitoring Xylem Hydraulic Pressure in Woody Plants
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Author:
Date:
2017-10-20
[Abstract] Xylem sap circulates under either positive or negative hydraulic pressure in plants. Negative hydraulic pressure (i.e., tension) is the most common situation when transpiration is high, and several devices have been developed to quantify it accurately (e.g., Scholander pressure chamber, psychrometers). However, a proper measurement of positive xylem sap pressures may be critical when pressure is generated by the root system, allowing vessels to be refilled. Here, we describe two different methods to monitor positive xylem bulk pressure: the pressure gauge which can only be set onto a rootstock or a side branch and the point pressure sensor, which can allow measurements from a functioning plant without detopping or cutting.
[摘要] 木质部汁液在正或负液压下在植物中循环。 负压液压（即，张力）是蒸腾量较高时最常见的情况，并且已经开发了几种装置来准确地对其进行定量（例如，Scholander压力室，温度计）。 然而，当根系产生压力时，正确的木质部汁液压力的正确测量可能是至关重要的，从而允许容器被再填充。 在这里，我们描述了两种不同的方法来监测阳性木质部体积压力：只能设置在砧木或侧枝上的压力计和点压力传感器，这可以允许从功能性植物进行测量而无需去顶部或切割。
【背景】虽然植物可以从关键水平的木质部栓塞中恢复，但针叶树（Brodribb和Cochard，2009）的水力传导损失<50％，被子植物（Urli等人，2013）<88％），确切的机制仍在争论之中。液体的上升由大气的蒸发需求驱动，这在水柱中产生负压（即，张力）和分子之间的氢键（即，凝聚力）通过良好接受的内聚力理论（dixon，1896; angeles等人，2004）将汁液从植物中提取出来。然而，可以在特定条件下记录正的木质部汁液压力，例如水饱和土壤结合非常低的蒸腾。已经显示这种机制在春季（sperry等人，1994）和经历冻融诱导栓塞的物种（charrier等人，2013年）中重新填充栓塞血管和2014）。栓塞血管的重新填充已被假设发生在金黄色葡萄球菌或葡萄球菌中的阳性和阴性木质部汁液压力下，例如（salleo等人，，1996）。然而，“紧张紧张”机制与凝聚力紧张理论不一致（zwieniecki和holbrook，2000）。此外，最近的作品表明，再灌注仅发生在vitis=""> ...
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| Detection of Protein S-nitrosothiols (SNOs) in Plant Samples on Diaminofluorescein (DAF) Gels
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Author:
Date:
2017-09-20
[Abstract] In plant cells, the analysis of protein S-nitrosothiols (SNOs) under physiological and adverse stress conditions is essential to understand the mechanisms of Nitric oxide (NO)-based signaling. We adapted a previously reported protocol for detecting protein SNOs in animal systems (King et al., 2005) for plant samples. Briefly, proteins from plant samples are separated via non-reducing SDS-PAGE, then the NO bound by S-nitrosylated proteins is released using UV light and, finally, the NO is detected using the fluorescent probe DAF-FM (Rodriguez-Ruiz et al., 2017). Thus, the approach presented here provides a relatively quick and economical procedure that can be used to compare protein SNOs content in plant samples and provide insight in NO-based signaling ...
[摘要] 在植物细胞中，生理和不利胁迫条件下的蛋白质S-亚硝基硫醇（SNO）的分析对于了解一氧化氮（NO）的信号传导机制至关重要。 我们调整了以前报告的用于检测动物系统中蛋白质SNO的方法（King等，2005），用于植物样品。 简言之，通过非还原性SDS-PAGE分离来自植物样品的蛋白质，然后使用UV光释放由S-亚硝基化蛋白质结合的NO，最后使用荧光探针DAF-FM检测NO（Rodriguez-Ruiz et 等等，2017）。 因此，本文提出的方法提供了相对快速和经济的方法，可用于比较植物样品中的蛋白质SNOs含量，并提供植物中基于NO的信号传导的洞察。
【背景】一氧化氮（NO）是一种自由基，可与各种生物分子阵列相互作用，包括蛋白质，脂质和核酸。在蛋白质的情况下，最相关的翻译后修饰（PTM）之一是NO基团与存在于肽或蛋白质中的半胱氨酸（Cys）的硫醇（-SH）侧链的共价连接。该修饰产生称为S-亚硝基硫醇（SNO）的家族，其是动物和植物系统中重要的化合物（Foster等人，2003; Lindermayr和Durner，2009; Astier等人，2011; ...
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| Leaf Clearing Protocol to Observe Stomata and Other Cells on Leaf Surface
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Author:
Date:
2017-09-05
[Abstract] In this protocol, leaves are cleared and fixed in an ethanol and acetic acid solution, and mounted in Hoyer’s solution. The cleared leaves are imaged under differential interference contrast (DIC) microscope. This protocol is beneficial for studying stomata, hair cells, and other epidermal cells in plants.
[摘要] 在该方案中，将叶子清除并固定在乙醇和乙酸溶液中，并安装在Hoyer溶液中。 清除的叶片在差分干涉对比（DIC）显微镜下成像。 该方案有利于研究植物中的气孔，毛细胞和其他表皮细胞。
【背景】观察气孔和其他表皮细胞如植物叶片表面毛细胞有多种方法。 传统上，将明亮的指甲油或木胶施加到叶子表面并使其干燥。 将叶片剥离并在显微镜下观察。 或者，将透明胶带施加到叶子上并去除以观察叶表面的印记。 这些传统方法可用于坚固的较厚的叶子，但是图像通常不是最高质量的。 小而脆弱的叶如拟南芥叶需要更先进的方法。 还可以在显微镜下直接观察到新鲜的拟南芥或Brachypodium叶。 然而，叶片中的厚度和颜料在观察气孔和其他表皮细胞方面是困难的。 该协议描述了一种清除叶片，用于可视化包括其他表皮细胞在内的气孔的方法，并且获得了在同行评审期刊中出版的优质图像（Anderson，1954）。
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